Hidrólisis del Almidón

Hidrólisis del Almidón

 Objetivos: 

 Verificar el poder reductor del Almidón con reactivo de Fehling y Lugol 

Materiales:

-Tubos de ensayo

-Mechero

Sustancias:

-Almidón

-Reactivos de Fehling A y B

-Lugol

Procedimiento:

Reactivo de Fehling:

Se colocan 10 gotas de la solución A y10 gotas de la solución B y agitamos para que se mezclen. Luego le agregamos el almidón, y calentamos hasta ebullición. Si observamos que se forma un color rojizo o marrón significa que el almidón tiene poder reductor. Luego lo realizamos con el producto de la Hidrólisis del Almidón.

  

Ensayo con Lugol:

Se le agrega una gota de Lugol al producto a examinar( si contiene Almidón). Si observamos este producto toma un color azul oscuro significa que contiene Almidón. Nuestro producto a examinar: galleta.
                                          

Conclusión:
Observamos que para el reactivo de Fehling el resultado es negativo por lo tanto el Almidón no es reductor.
Con el producto de la Hidrólisis del Almidón dio positivo.(libera Glucosa entre otras)

Observamos que para el ensayo de Lugol dio positivo en la galleta. 

  

Glúcidos

                                    
                                                   GLÚCIDOS

Objetivos:
Saber el poder reductor de monosacáridos y disacaridos.
  
Materiales:
-Vaso de bohemia 
 -Mechero 
-Cuenta gotas

Sustancias:
-Glucosa
-Fructosa
-Maltosa
-Sacarosa
-Reactivo de Fehling A y B
-Reactivo de Tollens - AgNO3 y NaOH

 Procedimiento:

Reactivo de Fehling:


Se colocan las 10 gotas de la solución A  y las 10 gotas de la solución B y agitamos para que se mezclen. Luego le agregamos 20 gotas de la muestra a analizar. Luego calentamos hasta ebullición. Si observamos que la sustancia queda roja o marrón quiere decir que tiene poder reducto.
Y repetimos el procedimiento para las demás muestras(Glucosa,Fructosa, Sacarosa y Maltosa).

Reactivo de Tollens:

Se colocan 20 gotas de AgNO3 y una gota de NaOH. Luego se le agrega NH3 gota a gota hasta disolver el solido formado. Luego se colocan 20 gotas de la muestra y calentamos sin agitar. SI observamos que la sustancia forma un espejo de plata en las paredes del recipiente significa que tiene poder reductor.

Conclusión:

Observamos que para el reactivo de Fehling:
Glucosa - positivo
Fructosa - positivo
Maltosa - positivo
Sacarosa - negativa pero si se lo hacemos a la hidrolisis de la sacarosa da positivo

Realizamos con las mismas muestras el reactivo de Tollens y observamos que:   
Glucosa - positivo
Fructosa - positivo
Maltosa - positivo

 Observamos que todos los Monosacáridos y Di-sacáridos tienen poder reductor
Poder reductor: Es la capacidad de ciertas biomoléculas de actuar como donadoras de electrones o receptoras de protones en reacciones metabólicas de reducción-oxidacion 
 
 
   

 

Jabones y detergentes

Objetivos:

1. Obtener un jabón y un detergente
2. Realizar el estudio comparativo de algunas de las propiedades de jabones y detergentes

 Materiales:

• 2 vasos de bohemia de 50mL
• Probeta de 10mL
• Soporte para el vaso de Bohemia
• Gradilla con tubos de ensayo
• Pinza para el vaso de Bohemia y tubos
• Varilla de vidrio 
• Espátula, Cuenta gotas, mechero
• Embudo, papel de filtro
• Papel PH

 Sustancias:

• Aceite de coco
• Solución hidro-alcohólica de NaOH  
• Soluciones:

1. NaOH 6 M 
2. CaCl 1%
3. Urea 40%
4. NH4 2SO4 40%
5. NaClO

•  Azufre en polvo
• Bióxido de manganeso 
• Agua
• Ácido bencenosulfónico

Procedimiento:
    Parte 1: Obtención del jabón
Medimos 18 mL de la solución hidro-alcohólica de NaOH en un vaso de Bohemia, luego lo calentamos suavemente hasta que quede tibio, medimos 25 mL de aceite de coco y agregamos lentamente en el vaso de Bohemia con la solución agitando continuamente hasta que se forma una pasta, luego apagamos el mechero y sacamos el jabón con una cuchara hacia un molde.
Para finalizar lo dejamos enfriar hasta que queda duro.

 Obtención del detergente 
Colocamos 2 cucharaditas de ácido sulfónico en un vaso de plástico, lo neutralizamos agregando gota a gota el hidróxido de sodio 6M con continua agitación. Medimos el PH hasta alcanzar un PH entre 6 y 8 en caso de ser necesario se agrega mas hidróxido de sodio.
Se le adicionan 2 gotas de hipoclorito de sodio como blanqueador.
Se le incorporan 5mL de urea como solubilizante (medidos con la probeta), agregamos 15mL de agua y 2mL de sulfato de amonio como espesante, sin dejar de mezclar. Lo dejamos reposar y finalmente obtendremos nuestro detergente.

Parte 2: Estudio comparativo de propiedades
a) Coloca un trozo pequeño de jabón obtenido en un vaso de Bohemia, agregue agua y agite
b) En otro vaso de Bohemia coloque agua hasta aprox. 40 mL y agregue  10mL de detergente. Agite

Acción emulsionante: 
a) Coloque en un tubo de ensayo 2 mL agua y 5 gotas de aceite al agitar observamos que no se mezclan
b) Repetimos el procedimiento pero esta vez con 2 mL de solución jabonosa y 2mL de solución de detergente en tubos separados.
Agitamos y observamos que la que contiene jabón queda separada mientras que la que contiene el detergente

Efecto del ión calcio
a)Coloque 2mL de solución jabonosa en un tubo y en otro 2mL de solución detergente. Agite para aumentar la espuma.
b)A cada tubo le agregamos una gota de cloruro de calcio y observamos que el que contiene el jabón se le va la espuma y el que tiene el detergente le permanece la espuma

Efecto sobre la tensión superficial
a)Colocamos aprox. 40mL de agua en un vaso de bohemia y espolvoreamos azufre sobre la superficie y observamos que no se unen
b)realizamos el mismo procedimiento pero con la solución jabonosa y la de detergente observando que la que contiene el jabón se une y la del detergente se hunde

Poder detergente
a)Colocamos en un tubo de ensayo agua y una punta de espátula de bióxido de manganeso y al agitar observamos que se disuelve. 
b)Hicimos el mismo procedimiento pero con las soluciones de jabón y detergente observando que en la solución con jabón se disuelve, y en la solución detergente se forma espuma 
c)Filtramos el contenido de los 3 tubos y observamos que:

• la que contiene el jabón pasa el jabón y el manganeso no
• la que contiene el detergente pasa todo
• la que contiene el agua pasa solo el agua

Cuestionario
1- Averigua la composición porcentual de ácidos grasos presentes en el aceite de coco.
2- Formule las ecuaciones químicas correspondientes a la formación del jabón y a la formación del detergente.
3-Explique la acción detersiva(emulsionante,y tensoactiva) del jabón y del detergente.
4-¿Que entiendes por agua dura? ¿cual de las soluciones preparadas es la mas adecuada para cumplir con la acción detergente en este medio? 

Respuestas
1-La composición porcentual de ácidos grasos en el aceite de coco es de 1.5%  aprox.        
                  
2-C12 H24O2     +     NaOH ----------> NaCO2  + C3O3H8  + H2O Jabón
   C12 H24O2      +     SO3H  ----------> C16O4SH34 + H2O      Detergente


3-Los jabones limpian sobre las grasas, cuando hay agua debido a la estructura de sus moléculas. Éstas tienen una parte liposoluble (soluble en grasas) y otra hidrosoluble (soluble en agua).
La efectividad de los agentes tensioactivos de los detergentes como emulsionantes está basada en su capacidad para disminuir la tensión superficial, así como en sus propiedades solubilizantes y dispersantes. La inmediata emulsificación que se obtiene con los agentes tensioactivos es el resultado de su capacidad para reducir la tensión superficial.

4-el agua dura es aquella que esta enriquecida en sales y minerales tales como el calcio y magnesio.
La solución preparada mas adecuada para cumplir con la acción detergente, seria la de poder detergente.

Matias Duarte
Néstor García
Alexis Kerzul
























































 

Proteinas 2

Objetivo: Comprobar si las proteínas de la gelatina logran traspasar el filtro semipermeable de celofán por medio de Diálisis.

Materiales:

• Vaso de Bohemia
• Agua destilada
• Gelatina
• Mechero
• Agua (H2O)
• Membrana de celofán (semipermeable)
• AgNO3 Nitrato de Plata
• NaCl Cloruro de sodio

Procedimiento:
Primera parte: Comenzamos preparando la gelatina y la colocamos en nuestro dializador el cual esta introducido en un vaso de Bohemia que contiene agua destilada y lo sumergimos. Luego lo calentamos hasta ebullición.

Segunda parte: Tomamos dos muestras de ambos líquidos y comprobamos si tienen proteínas a través del ensayo de Biuret y sal a través del ensayo de AgNo3.

 Ensayo de Biuret: se coloca una de las muestras en un tubo de ensayo y se le agregan 20 gotas de NaOH y luego 2 gotas de CuSO4. 
Si observamos que la muestra queda violeta quiere decir que contiene proteínas.

Ensayo de AgNO3: se coloca una de las muestras en un tubo de ensayo y se le agregan 3 gotas de AgNO3 en la solución.
Si observamos que la muestra queda blanca quiere decir que contiene sal.

Conclusión: Luego de realizar todo el procedimiento llegamos a la conclusion por medio de Biuret que en el agua destilada no han ingresado proteínas, mientras que en la muestra del dializador si hay proteínas. 
Y tanto en el agua destilada como en el dializador realizando el ensayo de AgNO3 observamos que hay sal.

Proteinas 1

Objetivo: El objetivo es extraer caseína de la leche, para luego reconocer su naturaleza proteica.

Materiales y sustancia:
*Vaso de bohemia                                         *Termómetro
*Varilla de vidrio                                            *Mechero
*Soporte                                                       *Tela metálica
*Gradilla                                                        *Tubos de ensayo
*Papel de filtro                                               *Leche descremada         
*Ácido etanoico 2,0 M                                  *Hidróxido de sodio al 10%
*Sulfato cúprico                                             *Ácido nítrico concentrado



Primera parte: Extracción
  Colocamos 25ml (aprox.) de leche descremada en un vaso de bohemia, calentamos hasta aprox. 40ºC agitando con una varilla de vidrio, luego le agregamos ácido etanoico(C₂H₄O2), 2.0 M(gota por gota) agitando continuamente hasta que se coagulo, después a través de un filtro separamos la caseína del suero, después separamos dos porciones del solido obtenido, y las colocamos en dos tubos de ensayo.

Segunda parte: Caracterización 

Reacción de Biuret: Agregamos sobre la caseína de uno de los tubos 20 gotas de NaOH, luego le agregamos 2 gotas de solución de CuSO4, y los sacudimos.

Reacción de xantoproteica: Agregamos sobre la caseína del tubo restante, 10 gotas de HNO3 concentrado, y esperamos un par de minutos.

Observaciones:

• observamos que la mezcla del tubo de Reacción de Biuret obtuvo un color violeta, por lo tanto por dio positivo, esto quiere decir que hay presencia de enlaces peptídicos.

• la muestra de reacción de xantoproteica quedo amarilla, por  lo tanto  dio positiva, esto indica que tiene restos aromáticos.

Conclusiones:
A través de una reacción de Biuret podemos detectar enlaces peptídicos, quedando la muestra de color violeta.
 Y por la reacción de xantoproteica si posee restos aromáticos, quedando la muestra de color amarillo.